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杂色鲍防御素HdDef1的分子特征和表达分析

姚托 卢洁 叶灵通 陈华生 王江勇

引用本文:
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杂色鲍防御素HdDef1的分子特征和表达分析

    作者简介: 姚 托(1984—),男,博士,助理研究员,从事贝类遗传育种研究。E-mail:yao-tuo@163.com;
    通讯作者: 王江勇, wjy104@163.com
  • 中图分类号: S 917.4

Molecular characterization and expression pattern analysis of a defensin (HdDef1) from small abalone (Haliotis diversicolor)

    Corresponding author: Jiangyong WANG, wjy104@163.com
  • CLC number: S 917.4

  • 摘要: 防御素(defensin)是最重要的抗菌肽(AMPs)之一,参与先天免疫防御反应。该研究通过RNA-seq和RACE技术从杂色鲍(Halitotis diversicolor)中克隆到一种新的防御素基因(命名为HdDef1)。HdDef1 cDNA的开放阅读框(ORF)为201 bp,编码66个氨基酸,编码蛋白由18个氨基酸的信号肽和48个氨基酸的成熟肽组成。HdDef1的成熟肽具有AMPs的特征,如较低的分子量、净正电荷(+1)、高疏水残基率(45%)。同时,成熟肽的6个半胱氨酸以C-X16-C-X3-C-X9-C-X4-C-X1-C模式排列,并通过三个二硫键(C1-C4,C2-C5和C3-C6)稳定α-螺旋/β-折叠基序(CSαβ)。此外,通过与冈比亚按蚊防御素在三维结构上的相似性及其系统进化关系比对表明,HdDef1是节肢动物防御素家族的新成员。荧光定量PCR显示,HdDef1转录本在肠、头、鳃、肝胰腺、外套膜和足中都有表达,其中肝胰腺具有最高的表达水平。哈维氏弧菌(Vibrio harveyi)感染后,肝胰腺中HdDef1 mRNA被显著诱导表达。这些结果表明,HdDef1可能在杂色鲍抵抗病原的免疫防御反应中发挥重要作用,但其在蛋白水平的抗菌活性还需要进一步研究。
  • 图 1  HdDef1基因的核苷酸序列和氨基酸序列

    Figure 1.  Nucleotide and deduced amino acid sequences of HdDef1

    图 2  杂色鲍HdDef1与其他软体动物和节肢动物防御素成熟肽的多序列比对

    Figure 2.  Multiple alignment of mature HdDef1 sequence and other defensins found in mollusks and arthropod

    图 3  杂色鲍HdDef1和冈比亚按蚊防御素结构

    Figure 3.  Structures of HdDef1 and A. gambiae defensin

    图 4  利用MEGA 5.05基于邻接邻接法构建的HdDef1系统进化树

    Figure 4.  Neighbor-joining phylogenetic tree of HdDef1by MEGA 5.05

    图 5  杂色鲍HdDef1的组织表达模式

    Figure 5.  Expression level of HdDef1 mRNA in different tissues

    图 6  H. harveyi感染后肝胰腺中HdDef1的时序表达模式

    Figure 6.  Temporal expression profile of HdDef1 mRNA in hepatopancreas post V. harveyi challenge

    表 1  实验所用引物序列

    Table 1.  Sequences of primers used in this study

    引物名称
    primer name
    引物序列(5′−3′)
    primer sequence
    序列信息
    sequence information
    P1 CATCACCTGCGATCTGCTCTCCTTTA 5′ RACE primer out(HdDef1)
    P2 TTCTGCCTGTGCTGCTAAATGCCTTG 5′ RACE primer in(HdDef1)
    P3 ACAGACACAGACGCCACCATGACAG 3′ RACE primer out(HdDef1)
    P4 GCCATACCGACGATGACAACAACCAAAC 3′ RACE primer in(HdDef1)
    Def-F TGGTTGTTGTCATCGTCGGTAT qRT-PCR primer for HdDef1
    Def-R AGTAACAAGGCATTTAGCAGCAC qRT-PCR primer for HdDef1
    18S-F ACGCATCTATCAAGTGTCTGCCCTA qRT-PCR primer for 18S
    18S-R CTGCTGCCTTCCTTGGATGTGGTAG qRT-PCR primer for 18S
    下载: 导出CSV
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出版历程
  • 收稿日期:  2019-03-01
  • 录用日期:  2019-06-26
  • 网络出版日期:  2019-08-22

杂色鲍防御素HdDef1的分子特征和表达分析

    作者简介:姚 托(1984—),男,博士,助理研究员,从事贝类遗传育种研究。E-mail:yao-tuo@163.com
    通讯作者: 王江勇, wjy104@163.com
  • 1. 中国水产科学研究院南海水产研究所,农业农村部南海渔业资源开发利用重点实验室,广东 广州 510300
  • 2. 惠来县华深水产养殖有限公司,广东 揭阳 515200

摘要: 防御素(defensin)是最重要的抗菌肽(AMPs)之一,参与先天免疫防御反应。该研究通过RNA-seq和RACE技术从杂色鲍(Halitotis diversicolor)中克隆到一种新的防御素基因(命名为HdDef1)。HdDef1 cDNA的开放阅读框(ORF)为201 bp,编码66个氨基酸,编码蛋白由18个氨基酸的信号肽和48个氨基酸的成熟肽组成。HdDef1的成熟肽具有AMPs的特征,如较低的分子量、净正电荷(+1)、高疏水残基率(45%)。同时,成熟肽的6个半胱氨酸以C-X16-C-X3-C-X9-C-X4-C-X1-C模式排列,并通过三个二硫键(C1-C4,C2-C5和C3-C6)稳定α-螺旋/β-折叠基序(CSαβ)。此外,通过与冈比亚按蚊防御素在三维结构上的相似性及其系统进化关系比对表明,HdDef1是节肢动物防御素家族的新成员。荧光定量PCR显示,HdDef1转录本在肠、头、鳃、肝胰腺、外套膜和足中都有表达,其中肝胰腺具有最高的表达水平。哈维氏弧菌(Vibrio harveyi)感染后,肝胰腺中HdDef1 mRNA被显著诱导表达。这些结果表明,HdDef1可能在杂色鲍抵抗病原的免疫防御反应中发挥重要作用,但其在蛋白水平的抗菌活性还需要进一步研究。

English Abstract

  • 软体动物缺乏获得性免疫系统,完全依赖非特异性免疫防御反应来阻止病原入侵。抗菌肽(AMPs)是先天免疫系统的主要成分,它构成了宿主抵抗病原体感染的第一道防线[1-2]。迄今为止,已超过40种软体动物AMPs收录于Antimicrobial Sequences Database(http://aps.unmc.edu/AP/main.php)。在海洋贝类中,AMPs可以直接结合并破坏菌膜从而杀死入侵的细菌[3]。目前,已经从贝类中鉴定出多种AMPs,包括防御素(defensins),大防御素(big defensins),贻贝素(mytilins),贻贝肽(myticins),贻贝霉素(mytimycins)和贻贝几丁质结合肽(mytichitins)[4-6]等。AMPs不仅具有广谱杀菌性、不易产生耐药性而且具有热稳性和水溶性好等特点,使其成为抗生素的潜在替代品[7-9]

    在众多AMPs中,防御素是最常见的家族之一。贝类防御素是小的阳离子肽(4~5 kD),存在3个或4个二硫键并具有半胱氨酸稳定的α-螺旋/β-折叠基序(Csαβ)[10]。鉴于半胱氨酸数量的差异,贝类防御素可分为两大类,第一种类型是六半胱氨酸防御素,属于节肢动物和软体动物-6半胱氨酸防御素,包括斑马贻贝(Dreissena polymorpha)[11]、池蝶蚌(Hyriopsis schlegelii)[12]和翡翠贻贝(Perna viridis)[13]等。第二种类型是八半胱氨酸防御素,属于软体动物型-8半胱氨酸防御素,包括花蛤(Venerupis philippinarum)[3]、牡蛎(Crassostrea gigasMagallana gigas)[14-15]、贻贝(Brachidontes pharaonis)[2]和河蚌(Cristaria plicata)[16]等。虽然这两种类型的防御素在一级结构上有所不同,但都具有相似的广谱抗菌活性。

    杂色鲍(Halitotis diversicolor)是一种生活在中国南部沿海的土著品种,具有很大的商业价值。近年来,由于大规模疾病暴发导致杂色鲍产量逐年下滑。而这些突发事件的发生与哈维氏弧菌(Vibrio harveyi)[17]的感染有着紧密的关系。因此,了解杂色鲍先天免疫反应的基本知识,是应对和处理类似事件的基础。在本研究中,鉴定和描述了一种新的杂色鲍防御素,研究和讨论了其预测蛋白的3D结构和组织特异性表达模式,同时还研究了哈维氏弧菌感染后该基因的瞬时表达变化。

    • 基于杂色鲍RNA-seq数据库中HdDef1的部分cDNA序列,使用SMARTer® RACE 5′/3′试剂盒(TaKaRa,大连,中国)提供的方法,设计4个基因特异性引物以获得3′和5′末端(表1)。巢式引物P1(外部)和P2(内部)用于5′ RACE,巢式引物P3(外部)和P4(内部)用于3′ RACE。第一轮PCR反应条件为:94 ℃ 30 s,70 ℃ 3 min,5个循环;94 ℃ 30 s,67 ℃ 30 s,72 ℃ 3 min,5个循环;94 ℃ 30 s,64 ℃ 30 s,72 ℃ 3 min,20个循环。第二轮PCR反应条件为:94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 3 min,30个循环;72 ℃ 10 min。最后,将PCR产物连接到pMD-18T载体(TaKaRa,大连,中国)中并进行双向测序,通过拼接3′和5′末端序列获得HdDef1全长序列。

      引物名称
      primer name
      引物序列(5′−3′)
      primer sequence
      序列信息
      sequence information
      P1 CATCACCTGCGATCTGCTCTCCTTTA 5′ RACE primer out(HdDef1)
      P2 TTCTGCCTGTGCTGCTAAATGCCTTG 5′ RACE primer in(HdDef1)
      P3 ACAGACACAGACGCCACCATGACAG 3′ RACE primer out(HdDef1)
      P4 GCCATACCGACGATGACAACAACCAAAC 3′ RACE primer in(HdDef1)
      Def-F TGGTTGTTGTCATCGTCGGTAT qRT-PCR primer for HdDef1
      Def-R AGTAACAAGGCATTTAGCAGCAC qRT-PCR primer for HdDef1
      18S-F ACGCATCTATCAAGTGTCTGCCCTA qRT-PCR primer for 18S
      18S-R CTGCTGCCTTCCTTGGATGTGGTAG qRT-PCR primer for 18S

      表 1  实验所用引物序列

      Table 1.  Sequences of primers used in this study

    • 使用BLAST(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast)和Expert Protein Analysis System(http://www.expasy.org)分析HdDef1的核苷酸和编码的氨基酸序列;使用Simple Modular Architecture Research Tool(http://smart.cmbl-heidelberg.de/)预测信号肽和蛋白质功能结构域;使用APD3(http://aps.unmc.edu/AP/prediction/prediction_main.php)评估净电荷和疏水比;通过Swiss-model(http://swissmodel.expasy.org/workspace)预测三级结构模型;使用ClustalX程序进行多序列比对。使用MEGA 5.05采用Neighbor-joining(NJ)法构建进化树。

    • 实验用杂色鲍取自中国水产科学研究院南海水产研究所深圳试验基地,运到实验室后,暂养两周。在此期间,海水水温保持在26 ℃,盐度为30。感染用哈维氏弧菌为杂色鲍致病菌,由本实验室保存。分别从6只健康鲍中取肠、头、足、外套膜、鳃和肝胰腺,用于HdDef1 mRNA的组织特异性表达分析。在感染实验中,将50 μL(1.6×106 CFU·mL−1)的哈维弧氏菌稀释液以足部注射方式感染杂色鲍,对照组注射等量的无菌过滤海水(SSW),在感染后的第2、第4、第6、第12、第24、第48和第72小时采集杂色鲍肝胰腺组织,所有采集样品都经过液氮速冻后放入–80 ℃冰箱中保存备用。

    • 使用TRIzol试剂盒(Invitrogen,Carlsbad,CA,USA)根据说明书从所有收集的组织中提取总RNA。使用NanoDrop 2000(Thermo Scientific,Waltham,MA,USA)检测RNA含量,通过1%琼脂糖凝胶电泳检查RNA完整性。采用PrimeScript TM RT试剂盒(TaKaRa,大连,中国),在20 μL反应系统中,以1 μg总RNA合成第一链cDNA。反转录中,选用RNA模板的OD260/OD280比率均在1.8和2.0之间。

    • 在LightCycler®480(Roche Biochemicals, Indianapolis,IN,USA)上使用SYBR® Premix Ex TaqTM II(TaKaRa,大连,中国)试剂盒进行荧光定量分析。选择18S rRNA作为参考基因。实验中使用的相关引物如表1所示。扩增条件为:95 ℃ 5 min;95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,40个循环。最后,进行扩增产物的溶解曲线分析。所有实验包含3个技术重复和3个生物学重复,采用2−ΔΔCT[18]获得基因表达量。

    • 数据采用平均值±MSE表示。使用SPSS 19.0统计软件对所有数据进行单因素方差分析(ANOVA),显著性差异设置为P<0.05。

    • 杂色鲍HdDef1 cDNA(GenBank登录号:MK358140)的全长为306 bp,由201 bp的开放阅读框(ORF),21 bp的5′非编码区(UTR)和84 bp 3′UTR组成。3′UTR具有典型的多聚腺苷酸加尾信号(AATAAA)和一个多聚A尾。该基因编码66个氨基酸,预测分子量为4.90 kD,理论等电点(pI)为7.82。预测信号肽为N端的1~18个氨基酸,成熟肽中含有6个保守的半胱氨酸残基(图1)。使用APD3软件对HdDef1成熟肽的抗菌特征进行预测,结果显示HdDef1具抗菌肽的特点,如较高的疏水残基比(45%)和净阳性电荷(+1)。

      图  1  HdDef1基因的核苷酸序列和氨基酸序列

      Figure 1.  Nucleotide and deduced amino acid sequences of HdDef1

      将杂色鲍HdDef1与Genbank中其他软体动物和节肢动物防御素的蛋白序列进行比对时发现,杂色鲍HdDef1与其他品种鲍防御素具有最高的相似性,如日本盘鲍(Halitotis discus discus)、皱纹盘鲍(H. discus hannai)和日本鲍螺(Halitotis madeka),其相似性分别为71.21%、71.21%和72.73%;其次,与来自节肢动物的防御素有较高的相似性,如印度跳蚁(Harpegnathos saltator)、黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)和冈比亚按蚊(Anopheles gambiae),其相似性分别为50.04%、32.54%和30.80%;然而,与海洋双壳贝类防御素的相似性较低,与紫贻贝(Mytilus galloprovincialis)防御素1的相似性为11.27%,与长牡蛎外套膜防御素的相似性为15%,与菲律宾蛤仔(Ruditapes philippinarum)防御素的相似性为6%。如图2所示,杂色鲍HdDef1的6个半胱氨酸的位置是保守的,且与节肢动物防御素具有相似的二硫键连接模式(C1-C4,C2-C5和C3-C6)。然而,由于两个额外的半胱氨酸残基的存在,在长牡蛎、菲律宾蛤仔和紫贻贝中形成4个二硫键(C1-C5,C2-C6,C3-C7和C4-C8)。此外,在所有物种的防御素中都检测到一个保守的甘氨酸残基(图2)。如图3所示,由Swiss-model预测的杂色鲍HdDef1 3D结构模型与蛋白质数据库中的冈比亚按蚊防御素(2ny9)相似。这两种防御素都具有一些相似的结构特征,如都含有一个α-螺旋和两个β-折叠,且3个二硫键位于相似的位置。

      图  2  杂色鲍HdDef1与其他软体动物和节肢动物防御素成熟肽的多序列比对

      Figure 2.  Multiple alignment of mature HdDef1 sequence and other defensins found in mollusks and arthropod

      图  3  杂色鲍HdDef1和冈比亚按蚊防御素结构

      Figure 3.  Structures of HdDef1 and A. gambiae defensin

      图4所示,使用Mega 5.05将来自软体动物、节肢动物、鱼类和哺乳动物的防御素基于邻接法构建了系统发育树。这些选定的防御素主要分为两大类:无脊椎动物和脊椎动物防御素。在无脊椎动物中,鲍类连同斑马贻贝与节肢动物防御素形成一个分支,而其他双壳贝类防御素形成另一个分支。此外,脊椎动物防御素也分为两大支,分别为鱼类和哺乳动物防御素。

      图  4  利用MEGA 5.05基于邻接邻接法构建的HdDef1系统进化树

      Figure 4.  Neighbor-joining phylogenetic tree of HdDef1by MEGA 5.05

    • 采用qRT-PCR研究了杂色鲍HdDef1的组织分布。在所有组织中都检测到HdDef1的表达,包括肠、头、鳃、足、外套膜和肝胰腺(图5)。HdDef1在肠中的表达量最低;在头、鳃、足和外套膜中的表达量都显著高于肠中的表达量(P<0.05),但头、鳃、足和外套膜中表达量差异不显著;肝胰腺具有最高的表达量并显著高于其他组织(P<0.05)。

      图  5  杂色鲍HdDef1的组织表达模式

      Figure 5.  Expression level of HdDef1 mRNA in different tissues

    • 肝胰腺是重要的免疫防御器官,并且肝胰腺为HdDef1表达的主要组织,因此该研究检测了杂色鲍经过哈维氏弧菌(V. harveryi)感染后,肝胰腺中HdDef1在不同时间点的瞬时表达模式。如图6所示,在感染后的第6小时内,HdDef1被诱导表达,且第4和第6小时的表达量显著高于第0小时(P<0.05)。感染后第12小时,HdDef1表达量急剧降低且显著小于第0小时(P<0.05)。然后,随着时间的推移,表达量缓慢上调。

      图  6  H. harveyi感染后肝胰腺中HdDef1的时序表达模式

      Figure 6.  Temporal expression profile of HdDef1 mRNA in hepatopancreas post V. harveyi challenge

    • 杂色鲍是中国南部沿海地区大规模养殖的经济品种。近年来,由于集约化海水养殖的快速发展和养殖水环境的恶化,增加了杂色鲍对许多病原的易感性(如弧菌属细菌等)。杂色鲍完全依赖于先天免疫,而不具有获得性免疫。因此,迫切需要掌握杂色鲍先天免疫的基础知识。其中,抗菌肽(AMPs)被认为是海洋无脊椎动物先天免疫系统的主要组成部分[19-21]。在该研究中,通过转录组测序和RACE技术从杂色鲍中克隆了一种新型防御素HdDef1。

      目前,贝类防御素主要分为两种类型。第一种类型为含有6个半胱氨酸残基的多肽,多肽中半胱氨酸残基的排列方式为C-X5-16-C-X3-C-X9-10-C-X4-7-C-X1-C,由半胱氨酸形成的二硫键的连接方式为C1-C4,C2-C5和C3-C6。第二种类型为含有8个半胱氨酸残基的多肽,多肽中半胱氨酸残基的排列方式为C-X5-6-C-X3-C-X4-6-C-X3-4-C-X7-8-C-X-C-X2-C,由半胱氨酸形成的二硫键的连接方式为C1-C5,C2-C6,C3-C7和C4-C8[22-23]。另外,贝类防御素还含有3~4个二硫键稳定的一个α-螺旋和反平行的双链β-折叠结构[10, 24]。在本研究中,杂色鲍HdDef1含有6个半胱氨酸残基,其形成3个二硫键(C1-C4,C2-C5和C3-C6),并以C-X16-C-X3-C-X9-C-X4-C-X1-C的模式排列。这与日本盘鲍防御素相似,同属于第一种类型[25]。此外,预测3D模型显示杂色鲍HdDef1同样具有一个α-螺旋和两个反平行的β-折叠链。多重比对和系统发育树分析表明,与含有8个半胱氨酸残基的贝类防御素相比,杂色鲍HdDef1更接近节肢动物防御素。同样,在其他含有6个半胱氨酸残基的贝类防御素中也发现了类似现象,包括斑马贻贝[11]和翡翠贻贝[13]等。

      由于参与抗菌活动的空间部位不同,贝类防御素具有多种组织表达模式。外套膜是贝类暴露于海洋环境中最多的组织之一,为免疫防御的第一道防线[26-27]。一些贝类的防御素主要分布于此组织中,包括日本盘鲍[25]和长牡蛎[14]。血细胞是无脊椎动物免疫的主要细胞效应物,血细胞可将大量的可溶性抗微生物和细胞毒性物质分泌到血淋巴中。在花蛤中,血细胞为防御素表达的主要组织[3]。在贻贝中,防御素(MGD1和MGD2)仅在血细胞中产生[28]。由于和足丝形成相关,斑马贻贝的防御素主要在足部表达[11]。在该研究中,杂色鲍肝胰腺为表达HdDef1的主要组织,与翡翠贻贝防御素的组织表达分布一致[13]。肝胰腺是一种重要的免疫组织,它可以合成免疫因子,启动免疫体液反应,并含有许多高度特化的细胞和巨噬细胞[29-30],因此HdDef1在肝胰腺中的高表达可能与此有关。

      为探讨细菌感染后杂色鲍HdDef1的表达情况,该研究检测了杂色鲍经革兰氏阴性细菌(哈维氏弧菌)感染第72小时内,肝胰腺中HdDef1的相对表达水平。结果显示,哈维氏弧菌可显著诱导杂色鲍肝胰腺HdDef1表达。在经过革兰氏阴性菌感染后,斑马贻贝[11]、美洲牡蛎(Crassostrea virginica)[31]和翡翠贻贝[13]的防御素也可被诱导表达。然而,这与长牡蛎的研究结果不同。长牡蛎防御素主要抑制革兰氏阳性菌的生长,而对革兰氏阴性菌的抑制效果有限[32-33]。在注射哈维氏弧菌后的第6小时,HdDef1 mRNA达到最高表达水平。而翡翠贻贝和菲律宾蛤仔防御素分别在感染后的第24和第12小时具有最高表达[13, 34],这可能与物种的生理状态和感染细菌剂量的不同有关。在感染后第12小时,杂色鲍HdDef1的表达量急剧下降;随后,在第24、第48和第72小时逐渐恢复,此结果与池蝶蚌类似[12]。作为防御反应的第一道防线,杂色鲍HdDef1的下调表达可能与病原体的逐步清除有关。随着病原体的持续入侵,有其他细胞因子开始被转录,以增强免疫防御反应,弥补防御素的衰竭。综上,哈维弧菌感染后杂色鲍肝胰腺HdDef1能够被显著诱导表达,但病原体感染后HdDef1的潜在作用机制还需要进一步研究。

参考文献 (34)
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