留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

不同处理条件下鲢鱼糜凝胶水分状态和微观结构的特征

叶韬 戴慧敏 林琳 姜绍通 陆剑锋

引用本文:
Citation:

不同处理条件下鲢鱼糜凝胶水分状态和微观结构的特征

    作者简介: 叶 韬(1988 —),男,硕士,助教,从事水产品加工与贮藏研究。E-mail: yetao430@163.com;
    通讯作者: 陆剑锋, lujf@sibs.ac.cn
  • 中图分类号: TS 254.4

Water state and microstructure characteristics of surimi gel from silver carp with different processing conditions

    Corresponding author: Jianfeng LU, lujf@sibs.ac.cn
  • CLC number: TS 254.4

  • 摘要: 为探讨超高压改善低盐鲢(Hypophthalmichthys molitrix) 鱼糜凝胶品质的机制,利用低场核磁共振(low field nuclear magnetic resonance,LF-NMR)、差示扫描量热法(differential scanning calorimeter,DSC)、傅里叶红外光谱(fourier transform infrared spectroscopy,FT-IR)以及扫描电镜分析比较了超高压低盐鱼糜凝胶 [300 MPa,1.5% 氯化钠(NaCl)] 与常压低盐鱼糜凝胶(0.1 MPa,1.5% NaCl)以及常压普通鱼糜凝胶(0.1 MPa,2.5% NaCl)在水分状态和微观结构上的差异。DSC结果表明超高压低盐鱼糜凝胶可冻结水的冰点降低,结合水含量(17.58%)较低盐对照组(10.89%)显著提高;LF-NMR表明超高压低盐鱼糜凝胶弛豫时间T21、T23和T24左移,不易流动水的含量(76.65%)较低盐对照组(67.29%)提高了9.39%;超高压处理能使低盐鱼糜凝胶形成光滑、连续、均匀的三维网络结构。因此,超高压处理(300 MPa,10 min)能够提高低盐鲢鱼糜凝胶结合水含量、改善微观结构。
  • 图 1  不同压力下鱼糜凝胶强度的变化

    Figure 1.  Change of gel strength of surimi gel at different pressures

    图 2  不同压力下鱼糜凝胶的持水性变化

    Figure 2.  Change of water holding capacity (WHC) of surimi gel at different pressures

    图 3  超高压及常压鱼糜凝胶的差示扫描量热法图谱

    Figure 3.  DSC spectrum of surimi gel treated with UHP and at normal pressure

    图 4  鱼糜凝胶弛豫时间的变化 (T2)

    Figure 4.  Change of relaxation time (T2) of surimi gel

    图 5  鱼糜凝胶的傅里叶红外光谱

    Figure 5.  FT-IR spectra of surimi gel

    图 6  鱼糜凝胶扫描电镜图 (×2 000,×10 000)

    Figure 6.  Micrographs of surimi gel (×2 000, ×10 000)

    表 1  超高压及常压处理鱼糜凝胶中各种水分含量

    Table 1.  Various water contents in surimi gels treated with UHP and at normal pressure

    样品
    sample
    总水分含量/%
    total water content
    可冻结水含量/%
    freezable water content
    结合水含量/%
    bound water content
    2.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 76.87±2.39a 65.80±2.01a 11.07±1.03b
    1.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 77.74±3.10a 66.85±1.63a 10.89±1.70b
    1.5% 氯化钠NaCl (300 MPa/10 min) 76.96±1.05a 59.38±1.08b 17.58±1.97a
     注:UHP-300 MPa/10 min;同列不同字母表示差异显著(P<0.05)  Note: Different letters in the same column indicate significant difference (P<0.05).
    下载: 导出CSV

    表 2  鱼糜凝胶低场核磁共振自旋弛豫时间 (T2) 和峰比例 (P)

    Table 2.  LF-NMR spin-spin relaxation time (T2) and peak proportion (P) of surimi gel

    样品
    sample
    弛豫时间T2分布/ms
    T2 relaxation time distribution
    弛豫时间T2峰面积所占比例/%
    proportion of T2 relaxation time peak area
    T21 T22 T23 T24 P21 P22 P23 P24
    2.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 1.00±0.08a 5.11±0.21c 70.79±2.98a 403.70±19.45a 2.15±0.12a 0.59±0.05c 68.68±3.01b 29.20±1.12a
    1.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 0.86±0.03b 6.64±0.15b 70.65±3.34a 405.12±18.45a 1.93±0.16a 0.98±0.03b 67.29±2.95b 30.10±1.03a
    1.5% 氯化钠NaCl (300 MPa/10 min) 0.76±0.05c 7.03±0.35a 65.79±2.67b 371.12±23.16b 1.40±0.07b 1.59±0.11a 76.65±1.97a 20.36±2.05b
     注:同列不同字母表示差异显著 (P<0.05)  Note: Different letters in the same column indicate significant differences (P<0.05). The same case in the following tables.
    下载: 导出CSV

    表 3  鱼糜凝胶的傅里叶红外光谱数据

    Table 3.  FT-IR spectra data of surimi gel

    样品
    sample
    傅里叶红外光谱各峰值数据/cm–1 FT-IR spectra peak data
    PK1 PK2 PK3 PK4 PK5 PK6
    2.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 3 295 2 926 1 654 1 546.6 1 400 1 050
    1.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 3 295 2 925 1 655 1 546.6 1 400 1 049
    1.5% 氯化钠NaCl (300 MPa/10 min) 3 293.8 2 925.5 1 654.6 1 546.6 1 402 1 051
    下载: 导出CSV
  • [1] 陆剑锋, 邵明栓, 林琳, 等. 卡拉胶和超高压对鱼糜凝胶性质的影响[J]. 农业机械学报, 2011, 42(12): 164-170
    [2] 叶川. 微波处理与卡拉胶对低盐白鲢鱼糜凝胶特性的影响[D]. 合肥: 合肥工业大学, 2016: 8-33.
    [3] CANDO D, HERRANZ B, BORDERÍAS A J, et al. Different additives to enhance the gelation of surimi gel with reduced sodium content[J]. Food Chem, 2016, 196(1): 791-799
    [4] 付湘晋, 许时婴, 王璋. 微波加热法制备白鲢鱼低盐鱼糜凝胶[J]. 中国食品学报, 2010, 10(3): 52-57 doi: 10.3969/j.issn.1009-7848.2010.03.008
    [5] 朱克卫. 微波处理改善鱼糜制品凝胶性的研究进展[J]. 农产品加工:学刊, 2014, 9(18): 60-63
    [6] 郭宝颜, 梁燕, 周爱梅, 等. 超高压对罗非鱼肌动球蛋白物化特性的影响[J]. 现代食品科技, 2015, 31(6): 259-263
    [7] CANDO D, HERRANZ B, JAVIER BORDERIAS A, et al. Effect of high pressure on reduced sodium chloride surimi gels[J]. Food Hydrocolloid, 2015, 51(1): 176-187
    [8] 黄海. DSC在食品中的运用[J]. 食品与机械, 2002, 1(2): 6-9 doi: 10.3969/j.issn.1003-5788.2002.02.002
    [9] CARNEIRO C D S, MÁRAICO E T, JÚNIOR C A C, et al. Studies of the effect of sodium tripolyphosphate on frozen shrimp by physicochemical analytical methods and Low Field Nuclear Magnetic Resonance (LF H-1 NMR)[J]. LWT-Food Sci Technol, 2013, 50(2): 401-407 doi: 10.1016/j.lwt.2012.09.009
    [10] ZHOU Y, CHEN C, CHEN X, et al. Contribution of three ionic types of polysaccharides to the thermal gelling properties of chicken breast myosin[J]. J Agric Food Chem, 2014, 62(12): 2655-2662 doi: 10.1021/jf405381z
    [11] 陆剑锋, 邵明栓, 林琳, 等. 结冷胶和超高压对鱼糜凝胶性质的影响[J]. 农业工程学报, 2011, 27(11): 372-377 doi: 10.3969/j.issn.1002-6819.2011.11.069
    [12] 张莉莉. 高温(100~120 ℃)处理对鱼糜及其复合凝胶热稳定性的影响[D]. 青岛: 中国海洋大学, 2013: 55-60.
    [13] 罗晓玲, 杨瑞金, 赵伟, 等. 超高压处理复合鱼糜凝胶性能研究[J]. 食品与机械, 2010, 26(4): 15-18, 38
    [14] CHEN X, TUME R K, XIONG Y, et al. Structural modification of myofibrillar proteins by high-pressure processing for functionally improved, value-added, and healthy muscle gelled foods[J]. Crit Rev Food Sci, 2017, 5(1): 1-23
    [15] ZHANG Z, YANG Y, ZHOU P, et al. Effects of high pressure modification on conformation and gelation properties of myofibrillar protein[J]. Food Chem, 2017, 217(1): 678-686
    [16] MARIA MORENO H, CARBALLO J, BORDERIAS J. Application of Response Surface Methodology to study the effect of different calcium sources in fish muscle-alginate restructured products[J]. Ciencia e Tecnologia de Alimentos, 2011, 31(1): 209-216 doi: 10.1590/S0101-20612011000100032
    [17] CAO Y, XIA T, ZHOU G, et al. The mechanism of high pressure-induced gels of rabbit myosin[J]. Innov Food Sci Emerg, 2012, 16(1): 41-46
    [18] SANCHEZ-GONZALEZ I, CARMONA P, MORENO P A, et al. Protein and water structural changes in fish surimi during gelation as revealed by isotopic H/D exchange and Raman spectroscopy[J]. Food Chem, 2008, 106(1): 56-64 doi: 10.1016/j.foodchem.2007.05.067
    [19] FERNÁNDEZ P P, MARTINO M N, ZARITZKY N E, et al. Effects of locust bean, xanthan and guar gums on the ice crystals of a sucrose solution frozen at high pressure[J]. Food Hydrocolloid, 2007, 21(4): 507-515 doi: 10.1016/j.foodhyd.2006.05.010
    [20] BORCHARD W, KENNING A, KAPP A, et al. Phase diagram of the system sodium alginate/water: a model for biofilms[J]. Int J Biol Macromol, 2005, 35(5): 247-256 doi: 10.1016/j.ijbiomac.2005.02.006
    [21] RENAUD T, BRIERY P, ANDRIEU J, et al. Thermal properties of model foods in the frozen state[J]. J Food Eng, 1992, 15(2): 83-97 doi: 10.1016/0260-8774(92)90027-4
    [22] HAN M, WANG P, XU X, et al. Low-field NMR study of heat-induced gelation of pork myofibrillar proteins and its relationship with microstructural characteristics[J]. Food Res Int, 2014, 62(1): 1175-1182
    [23] 秦影, 汤海青, 欧昌荣, 等. 超高压处理对大黄鱼鱼糜水分状态和蛋白质结构的影响[J]. 农业工程学报, 2015, 31(23): 246-252 doi: 10.11975/j.issn.1002-6819.2015.23.033
    [24] 林晶晶, 林向阳, 吴佳, 等. 利用核磁共振技术研究鱼糜制品在储藏过程中的水分变化[J]. 食品科学, 2011, 32(19): 46-49
    [25] YANG J, DUNKER A K, POWERS J R, et al. β-Lactoglobulin molten globule induced by high pressure[J]. J Agric Food Chem, 2001, 49(7): 3236-3243 doi: 10.1021/jf001226o
    [26] CHEN X, CHEN C G, ZHOU Y Z, et al. Effects of high pressure processing on the thermal gelling properties of chicken breast myosin containing κ-carrageenan[J]. Food Hydrocolloid, 2014, 40(1): 262-272
    [27] KOBAYASHI Y, MAYER S G, PARK J W. FT-IR and Raman spectroscopies determine structural changes of tilapia fish protein isolate and surimi under different comminution conditions[J]. Food Chem, 2017, 226(1): 156-164
    [28] 陈星. 超高压处理对肌原纤维蛋白-多糖混合凝胶特性的影响及其机制研究[D]. 合肥: 合肥工业大学, 2014: 31-32.
    [29] KOC M, KOC B, SUSYAL G, et al. Improving functionality of whole egg powder by the addition of gelatine, lactose, and pullulan[J]. J Food Sci, 2011, 76(9): S508-S515 doi: 10.1111/jfds.2011.76.issue-9
  • [1] 曾学熙刘书成欧广勇章超桦洪鹏志吉宏武 . 从鱼糜下脚料中提取鱼油的研究. 南方水产科学,
    [2] 许永安吴靖娜苏捷杨叶辉 . 壳聚糖絮凝法回收鱼糜漂洗水中水溶性蛋白质的工艺研究. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095.0780.2011.03.001
    [3] 卢涵 罗永康 史策 冯力更 . 0 ℃冷藏条件下鲢阻抗特性与鲜度变化的相关性. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2012.05.012
    [4] 周卫军刘振兴柯浩马艳平郝乐徐明芳 . 鲢抗菌肽Hepcidin的基因克隆和表达及抑菌活性分析. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.03.009
    [5] 秦孝辉王从锋刘德富熊锋汪玲珑 . 不同光照强度对鲢、草鱼的诱集效果研究. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2015.03.008
    [6] 王靖张超王丹蔺丹清李娜娜汤勇 . 清河水库鲢鳙鱼类资源声学评估--回波计数与回波积分法的比较. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.1673-2227.2010.05.008
    [7] 熊孝勇劳海华叶星白俊杰 . 基因重组cystatin对鲢鱼糜肌球蛋白的保护作用初探. 南方水产科学,
    [8] 范鸿冰汪之颖刘鹏徐萍罗永康 . 鲢鱼骨胶原多肽螯合钙的制备研究. 南方水产科学, doi: doi:10.3969/j.issn.2095-0780.2014.02.011
    [9] 施海峰高键应杰林建宇许鑫波罗红宇 . 水溶性壳聚糖对鱼糜制品保鲜效果的影响. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2011.04.008
    [10] 杨洪生徐琦张美琴吴瑛吴光红 . 不同加工方式下草鱼鱼糜制品中杂环胺生成与变化的研究. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.03.011
    [11] 张伟李纯厚贾晓平陈丕茂方良 . 大亚湾混凝土鱼礁和铁制鱼礁附着生物群落结构的季节变化. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2015.01.002
    [12] 王晓艳王莎莎赵玉超刘永孙帆郭恩棉 . 孔雀鱼雌性生殖器官组织结构及卵子发生的研究. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.01.003
    [13] 苏天凤江世贵 . 竹筴鱼属鱼类线粒体DNA控制区结构及其系统发育分析. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2011.01.003
    [14] 范江涛冯雪陈作志 . 基于水温垂直结构的南海北部近海竹䇲鱼渔场分析. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2018.02.017
    [15] 陶诗王健鑫刘雪珠何芳芳俞凯成 . 鮸鱼消化道细菌群落结构及多样性初步研究. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2013.04.002
    [16] 于姗姗王青林董云伟 . 亲本高温驯化和囊胚期热应激对刺参幼体生长、发育影响的初步研究. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2015.04.007
    [17] 李勇洪洁漳李辉权 . 珠江口竹洲人工鱼礁与相邻天然礁附着生物群落结构研究. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2013.02.004
    [18] 李建柱侯杰张鹏飞柳尧全夏闰红马徐发 . 鱼菜共生模式中不同鱼类肠道微生物群落结构的比较. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2016.06.006
    [19] 梁君王伟定潘国良虞宝存 . 朱家尖人工鱼礁区鱼类和大型无脊椎动物群落结构变动初探. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.1673-2227.2010.04.003
    [20] 黄健生卢伟华邹潍力王耀 . 凝胶渗透色谱-气相-质谱测定鲸皮脂中的多氯联苯. 南方水产科学, doi: 10.3969/j.issn.1673-2227.2009.04.002
  • 加载中
图(6)表(3)
计量
  • 文章访问数:  528
  • HTML全文浏览量:  189
  • PDF下载量:  3
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2018-07-22
  • 录用日期:  2018-10-14
  • 网络出版日期:  2018-12-05

不同处理条件下鲢鱼糜凝胶水分状态和微观结构的特征

    作者简介:叶 韬(1988 —),男,硕士,助教,从事水产品加工与贮藏研究。E-mail: yetao430@163.com
    通讯作者: 陆剑锋, lujf@sibs.ac.cn
  • 1. 淮南师范学院生物工程学院,安徽 淮南 232038
  • 2. 合肥工业大学食品与生物工程学院,安徽 合肥 230009

摘要: 为探讨超高压改善低盐鲢(Hypophthalmichthys molitrix) 鱼糜凝胶品质的机制,利用低场核磁共振(low field nuclear magnetic resonance,LF-NMR)、差示扫描量热法(differential scanning calorimeter,DSC)、傅里叶红外光谱(fourier transform infrared spectroscopy,FT-IR)以及扫描电镜分析比较了超高压低盐鱼糜凝胶 [300 MPa,1.5% 氯化钠(NaCl)] 与常压低盐鱼糜凝胶(0.1 MPa,1.5% NaCl)以及常压普通鱼糜凝胶(0.1 MPa,2.5% NaCl)在水分状态和微观结构上的差异。DSC结果表明超高压低盐鱼糜凝胶可冻结水的冰点降低,结合水含量(17.58%)较低盐对照组(10.89%)显著提高;LF-NMR表明超高压低盐鱼糜凝胶弛豫时间T21、T23和T24左移,不易流动水的含量(76.65%)较低盐对照组(67.29%)提高了9.39%;超高压处理能使低盐鱼糜凝胶形成光滑、连续、均匀的三维网络结构。因此,超高压处理(300 MPa,10 min)能够提高低盐鲢鱼糜凝胶结合水含量、改善微观结构。

English Abstract

  • 鲢(Hypophthalmichthys molitrix)是中国重要的淡水养殖鱼种之一,也是目前研发鱼糜制品的一种重要原料[1]。在鱼糜的工业化制品中,通常添加质量分数2%~3%的食盐来生产鱼糜凝胶制品,但食盐摄入量过高可能会引起人体一系列的健康问题(如高血压、冠心病、动脉硬化等),开发低盐产品是鱼糜深加工的重要方向;然而,由于鱼糜盐溶性蛋白质在低盐条件下不能充分溶解、展开及相互作用,导致低盐制品的凝胶强度低、持水性低、口感粗糙等品质问题[2]

    提高低盐鱼糜制品凝胶品质是鱼糜加工企业研发的一个重要方向,如Cando等[3]发现使用胱氨酸(0.1%)、焦磷酸钠(0.05%)和赖氨酸(0.1%)作为低盐狭鳕(Theragra chalcogramma)鱼糜 [0.3% 氯化钠 (NaCl)] 的凝胶促进剂,有效地改善了鱼糜的凝胶品质。付湘晋等[4]研究发现采用微波加热法可显著提高低盐鲢鱼糜(1% NaCl)凝胶强度和持水性;然而,微波加热的不均匀性易导致鲢鱼糜内部温度不均一,而影响最终产品的品质[5]。超高压(ultra-high pressure,UHP)处理能够引起鱼糜蛋白质的四级、三级、甚至二级结构发生变化,从而影响鱼糜制品的凝胶品质[6]。有研究表明,300 MPa压力可以诱导阿拉斯加狭鳕鱼糜的肌原纤维蛋白在低盐条件下的(0.3% NaCl)充分展开,有效地改善了低盐狭鳕鱼糜凝胶的凝胶强度和持水性,说明超高压技术可有效地改善低盐海水鱼糜凝胶的品质特性[7]。然而,关于超高压技术改善低盐淡水鱼糜凝胶品质的相关报道较少,尤其是凝胶能力较差的低盐鲢鱼糜。低盐鲢鱼糜热凝胶的微观结构及水分状态直接影响着制品的凝胶强度和持水性,进而影响低盐产品的凝胶品质。差示扫描量热法(differential scanning calorimeter,DSC)可用来测定凝胶体系中的可冻结水(自由水)含量,再由总水分含量(直接干燥法)减去冻结水含量,得出结合水含量[8]。而低场核磁共振(low field nuclear magnetic resonance,LF-NMR)技术可以通过自旋-弛豫时间 (T2) 来定性定量分析低盐鱼糜中水分分布情况及流动性,是研究鱼糜水分状态的有效手段[9]。傅里叶红外光谱(fourier transform infrared spectroscopy,FT-IR)可用来分析蛋白凝胶的二级结构变化和分子内的氢键作用情况[10]。扫描电镜(scanning electron microscope,SEM)常被用来观察鱼糜凝胶制品的微观形貌[3]

    鉴于此,本文先采用单因素实验考察100~500 MPa、10 min、室温对低盐鲢鱼糜热凝胶强度和持水性的影响,得出超高压制备低盐鲢鱼糜热凝胶的最佳压力;然后比较超高压低盐(300 MPa,1.5% NaCl)鱼糜凝胶与常压低盐(0.1 MPa,1.5% NaCl)以及常压普通盐(0.1 MPa,2.5% NaCl)鱼糜凝胶的水分状态和微观结构,旨在为超高压技术在低盐鱼糜加工中的应用提供参考。

    • 生鲜鲢采购自合肥市包河区家乐福超市,体质量为(1.0±0.2 ) kg,体长为(35.0±3.0 ) cm;PVDC塑料肠衣,折叠直径为45~47 mm,填充后直径约30 mm。NaCl、蔗糖、山梨醇及复合磷酸盐等均为食品级,其他试剂均为分析纯,购于合肥美丰生物科技有限公司。

    • S2-5斩拌机(广州旭众食品机械有限公司);HZ-2两孔数显水浴锅(江苏金坛市环宇科学仪器厂);HPP. L2-600/0.6超高压实验机(天津华泰森淼生物工程技术股份有限公司);TA-XT plus质构仪(英国Stable Micro System公司);Q2000差示扫描量热仪(美国TA公司);Nicolet 6700傅立叶变换红外光谱仪(美国热电集团);CT15RT型台式高速冷冻离心机(上海天美生化仪器工程有限公司);JSM-6490LV扫描电子显微镜(日本电子株式会社);PQ001-20-025核磁共振成像分析仪(纽迈电子科技有限公司)。

    • 冷冻鱼糜4 ℃条件下解冻,先空斩3 min,再添加NaCl盐斩8 min,将斩拌好的鱼糜灌入肠衣,采用水浴二段式加热,35 ℃加热1 h后90 ℃加热0.5 h,使用冰水(约2 ℃)迅速冷却鱼糜热凝胶,冷却后的鱼糜置于4 ℃、24 h得到样品,依据盐斩中NaCl添加量的不同(1.5%和2.5%)分别得到常压低盐鱼糜和常压普通鱼糜[1]

    • 将灌肠之后的低盐(1.5% NaCl)鱼糜真空包装后,放入超高压设备,加入室温水,设置参数,进行升压、保压、卸压,之后取出样品,再进行上述的二段式水浴加热处理,得到超高压低盐鱼糜凝胶,4 ℃下冷藏,待测。考察压力100 MPa、200 MPa、300 MPa、400 MPa和500 MPa处理(10 min,室温约20 ℃)对凝胶强度和持水性的影响,选取最佳压力下的鱼糜凝胶进行后续测定。

    • 参照陆剑锋等[11]的方法,将4 ℃过夜的鱼肠取出,室温环境下剥去肠衣,切成高2.5 cm的圆柱体,使用直径5 mm球形探头(P/5S)在质构仪上测定其凝胶强度,包括破断力(breaking force,g)和凹陷深度(破断距离breaking distance,mm)。凝胶强度(gel strength,g·cm)以破断力与凹陷深度的乘积表示。测试参数为:触发类型Auto (Force),预压速度3 mm·s–1,下压速度1.5 mm·s–1,测试速度1.0 mm·s–1,回复速度1.0 mm·s–1,下压距离15 mm,感应力5 g,每组样品平行测6次。

    • 将鲢鱼糜凝胶切成约为2 mm厚的薄片,将其8等分后,取1.5~2.0 g样品,用滤纸包裹好后置于离心管中,8 000 r·min–1离心10 min后按照以下公式计算持水性 (water holding capacity,WHC)[2]

      式中W1为离心前质量(g);W2为离心后质量(g)。

    • 准确称取鱼糜凝胶样品(约15 mg)置于氧化铝坩埚中密封,氮气(N2)作为保护气体,密封坩埚置于DSC设备中,测定参数为:温度 –60~30 ℃,升温速率10 ℃·min–1,N2流速40~50 mL·min–1。可冻结水(包括自由水和不易流动水)含量可通过鱼糜凝胶在0 ℃附近的焓变测出,非冻结水含量为总含水量与可冻结水含量之差[12]。总水分含量通过美国分析化学协会 (AOAC) 标准方法在103~105 ℃进行恒重来测出。可冻结水含量的计算公式为:

      式中H0为纯水单位质量的焓变(J·g–1);H1为根据DSC测出的吸热峰面积计算出的单位质量的焓变(J·g–1)。

    • 取适量鱼糜凝胶样品(约5 g)用无信号纸包裹放于直径25 mm的玻璃管中,使用核磁共振分析软件及CPMG序列对其进行T2信号采集,共振频率18.18 MHz,磁体强度(0.50±0.08) T,线圈直径25 mm,磁体温度32 ℃,参数设为:P 90 (µs)=6,P 180 (µs)=11.4,有效信号起始点D 3=20 (µs),接收机带宽SW=100 kHz,重复采样等待时间TR=8 000 ms,模拟增益RG1=20,循环次数N=4,回波时间220 µs,共扫描15 000个回波,每个样品重复测3次[8]

    • 将鱼糜凝胶样品冷冻干燥,与纯KBr (大约1∶100)混合后研细均匀,置于模具中,在油压机上压成透明薄片,采用傅里叶变换红外光谱仪测定吸收光谱。检测条件为:波长4 000~400 cm–1,分辨率4 cm–1,扫描次数128次[12]

    • 将鱼糜凝胶切成的小块(5 mm×5 mm×3 mm),用0.1 mol·L–1的磷酸缓冲液(pH 7.2)清洗5 min,重复4次;再用2.5%的戊二醛溶液在4 ℃条件下固定24 h;再次用磷酸缓冲液(0.1 mol·L–1)清洗10 min,重复4次;然后依次用体积分数为50%、70%、80%、90%、95%和100%的乙醇溶液进行脱水,脱水后冷冻干燥约15 h,真空离子溅射仪喷金后,扫描电镜观察并拍照[2]

    • 凝胶强度是指凝胶崩裂或断裂时单位面积所受的力,反应出凝胶内部结构的坚实程度,是衡量鱼糜制品品质的一项重要指标[11]。压力对低盐鱼糜凝胶强度的影响呈先增大后减小的趋势(图1)。最初施压时,随着压力增大,低盐鱼糜的凝胶强度也逐步增大,在压力300 MPa时达到最大值(258.24 g·cm);继续增大压力,鱼糜凝胶的凝胶强度反而有所降低(P>0.05);当压力达到500 MPa时,则显著降低(P<0.05)。罗晓玲等[13]报道400 MPa高压处理能够显著提高马鲛(Scomberomorus niphonius)鱼糜凝胶强度,当压力继续增加,凝胶强度减弱,本研究结果与其类似。

      图  1  不同压力下鱼糜凝胶强度的变化

      Figure 1.  Change of gel strength of surimi gel at different pressures

      超高压前处理能引发肌原纤维蛋白的变性,从而影响后续的鱼糜热凝胶品质。一定压力范围内,随着压力的增大,蛋白构象发生改变,蛋白表面疏水性增强、蛋白活性巯基含量增加,从而有助于后续加热过程中分子间的键合作用,进而形成更加致密的凝胶网状结构[14];当压力大于300 MPa时,能够引起肌原纤维蛋白发生较大程度的变性,并通过氢键、疏水相互作用,甚至分子间的二硫键聚集成蛋白大分子,大分子不利于形成致密、均匀的凝胶网状结构,从而使得鱼糜的凝胶强度下降[15]。常压低盐鱼糜凝胶强度(203.92 g·cm)显著低于常压普通鱼糜凝胶强度(214.87 g·cm,P<0.05),表明减少斩拌过程中NaCl的添加量,使得鱼糜的凝胶强度降低,而300 MPa压力的超高压低盐鱼糜凝胶的强度显著大于常压低盐和常压普通鱼糜凝胶(P<0.05)。因此,超高压处理能够有效地提高低盐鱼糜的凝胶强度。

    • 鱼糜凝胶持水能力是鱼糜凝胶特性的重要指标之一,它与蛋白质分子间的作用力(静电作用、疏水作用、氢键、范德华力)、凝胶水分状态及微观结构等有关[16]。压力对低盐鱼糜持水性的影响与凝胶强度变化趋势一致,当压力在300 MPa时达到最大值(75.38%)。这可能因为适当的超高压处理诱导蛋白质变性而暴露出更多的疏水基团,有利于增强后续热凝胶形成中的疏水相互作用,能形成更加致密、稳定的凝胶网络,致密的凝胶能够捕捉更多的水分[17],从而提高了鲢鱼糜制品的持水性。而当压力为500 MPa,低盐鱼糜的持水性则显著降低(P<0.05),这是因为过高的压力下,肌原纤维蛋白发生聚集而使得热凝胶网络结构有孔洞,不利于水分保持,导致持水性减少[18]。常压低盐鱼糜凝胶的持水性(66.73%)显著低于常压普通鱼糜凝胶(70.34%,P<0.05),而300 MPa处理得到的超高压低盐鱼糜凝胶的持水性显著大于常压低盐和常压普通鱼糜凝胶(P<0.05,图2)。因此,300 MPa压力的前处理有助于提高低盐鲢鱼糜凝胶的持水性,为此选用此压力作为最佳压力进行后续研究。

      图  2  不同压力下鱼糜凝胶的持水性变化

      Figure 2.  Change of water holding capacity (WHC) of surimi gel at different pressures

    • 水分状态分布可以更直观地表现超高压处理后鱼糜凝胶持水能力的变化[9]。低盐鱼糜凝胶中的水分主要以结合水、不易流动水和自由水的形式存在。结合水是水分子以氢键或配位键与鱼糜凝胶中高分子链的极性基团相互作用而存在的,流动性差,且冰点以下不会冻结,又称为非冻结水[19]。不易流动水按照一定的取向包围着聚合物和结合水,冰点比纯水低;自由水存在于鱼糜凝胶的网状结构空隙中,冰点与纯水相差不大,自由水和不易流动水又称为可冻结水[20]。DSC可用来测定鱼糜凝胶中冰的熔化热而得到可冻结水(自由水和不易流动水)的含量,并通过鱼糜的水分含量计算得到鱼糜的非冻结水含量[21]

      从超高压处理对鱼糜凝胶水分状态分布影响(图3),可以看出鲢鱼糜凝胶在− 40~20 ℃出现一个比较宽的吸热峰,是可冻结水在温度变化过程的焓变。在添加了2.5 % NaCl的普通鱼糜凝胶和1.5% NaCl的低盐鱼糜凝胶中,吸收峰的温度分别为–32.75~15.70 ℃和–32.53~14.69 ℃,而进行了超高压处理的低盐鱼糜凝胶的吸收峰温度为–36.72~12.69 ℃。由此可见,普通鱼糜凝胶吸收峰温度较低盐鱼糜凝胶稍有偏移,且超高压低盐鱼糜凝胶吸收峰温度向低温度段偏移,即冰点温度降低。由图谱信息可计算得到可冻结水含量,各水分含量的具体结果见表1。从表1也可以进一步看出,普通鱼糜凝胶的结合水含量大于低盐鱼糜凝胶;超高压低盐鱼糜凝胶的可冻结水含量(59.38%)显著减少(P<0.05),这与图3中吸热峰面积有所减小相对应,表明更多的水分状态发生变化而形成了不可冻结水,由此可见,超高压处理降低了低盐鱼糜凝胶的冰点温度,并显著提高了结合水含量(17.58%,P<0.05)。

      图  3  超高压及常压鱼糜凝胶的差示扫描量热法图谱

      Figure 3.  DSC spectrum of surimi gel treated with UHP and at normal pressure

      样品
      sample
      总水分含量/%
      total water content
      可冻结水含量/%
      freezable water content
      结合水含量/%
      bound water content
      2.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 76.87±2.39a 65.80±2.01a 11.07±1.03b
      1.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 77.74±3.10a 66.85±1.63a 10.89±1.70b
      1.5% 氯化钠NaCl (300 MPa/10 min) 76.96±1.05a 59.38±1.08b 17.58±1.97a
       注:UHP-300 MPa/10 min;同列不同字母表示差异显著(P<0.05)  Note: Different letters in the same column indicate significant difference (P<0.05).

      表 1  超高压及常压处理鱼糜凝胶中各种水分含量

      Table 1.  Various water contents in surimi gels treated with UHP and at normal pressure

    • LF-NMR是用来测定水分含量和分布最直接有效的方法,鱼糜凝胶的水分状态直接影响其持水性,进而影响凝胶品质。T2弛豫性可以反映低盐鱼糜制品中水分子的流动性,弛豫时间越长,表明水分越自由[22];每个峰的面积比例代表凝胶体系中不同状态水的含量大小。T2在1~10 000 ms的弛豫时间分布出现了4个峰T21、T22、T23和T24(图4),此结果与秦影等[23]报道的结果类似。其中T21(0~2 ms)表示单层水,与蛋白质等大分子表面的极性基团以氢键相结合,占据着亲水基团的第一层;T22 (2~10 ms)表示多层水,比单层水结合强度稍低,占据单层水或第一层剩下的位置,并形成单层水以外的几层。T23 (10~200 ms)表示束缚在鲢鱼糜中凝胶微观网络结构中的水分,是鱼糜凝胶中最主要的水分,约占鱼糜总凝胶水分的90%;T24 (200~800 ms)表示鱼糜凝胶空间网络结构以外,可以自由移动的水分,也称为自由水[24]。从图4表2可以看出,不同鱼糜凝胶样品的水分形态及分布存在一定差异,添加2.5% NaCl的普通鱼糜凝胶比添加1.5% NaCl的低盐鱼糜凝胶的弛豫时间T22、T24有所提前,且超高压处理的低盐鱼糜凝胶的弛豫时间T21、T23、T24时间也均显著提前(P<0.05),弛豫时间有差异表明水的流动性发生了变化,弛豫时间越短,表明水的结合能力越强,持水性越好;弛豫时间越长,则反之。弛豫时间T2所对应的峰面积比例差异见表2,其中P21、P22、P23和P24分别代表以上各弛豫时间所对应的峰面积比例,分别表示不同状态的水分含量。添加2.5% NaCl的普通鱼糜凝胶不易流动水(P23)含量大于添加1.5% NaCl的低盐鱼糜凝胶;超高压低盐鱼糜凝胶中P22、P23和P24有显著性差异(P<0.05),且P22、P23显著增加,P24显著减少。鱼糜制品中致密、有序的凝胶网络结构有助于捕获更多的水分并减弱水分流动性,从而降低鱼糜凝胶的横向弛豫时间[18,22]。这可能由于适当的超高压处理能够形成致密、均匀的凝胶网络结构而改变水分的流动性。此外,压力促使蛋白质发生解聚,溶解性升高,使更多的自由水与蛋白质形成结合水,进而增强了持水性能[25]。在鱼糜凝胶样品中,自由水流动性最大,离心时易损失,自由水含量较高时,鱼糜凝胶的持水能力较小、持水性差。

      图  4  鱼糜凝胶弛豫时间的变化 (T2)

      Figure 4.  Change of relaxation time (T2) of surimi gel

      样品
      sample
      弛豫时间T2分布/ms
      T2 relaxation time distribution
      弛豫时间T2峰面积所占比例/%
      proportion of T2 relaxation time peak area
      T21 T22 T23 T24 P21 P22 P23 P24
      2.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 1.00±0.08a 5.11±0.21c 70.79±2.98a 403.70±19.45a 2.15±0.12a 0.59±0.05c 68.68±3.01b 29.20±1.12a
      1.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 0.86±0.03b 6.64±0.15b 70.65±3.34a 405.12±18.45a 1.93±0.16a 0.98±0.03b 67.29±2.95b 30.10±1.03a
      1.5% 氯化钠NaCl (300 MPa/10 min) 0.76±0.05c 7.03±0.35a 65.79±2.67b 371.12±23.16b 1.40±0.07b 1.59±0.11a 76.65±1.97a 20.36±2.05b
       注:同列不同字母表示差异显著 (P<0.05)  Note: Different letters in the same column indicate significant differences (P<0.05). The same case in the following tables.

      表 2  鱼糜凝胶低场核磁共振自旋弛豫时间 (T2) 和峰比例 (P)

      Table 2.  LF-NMR spin-spin relaxation time (T2) and peak proportion (P) of surimi gel

    • 根据FT-IR检测结果,鲢鱼糜凝胶有3 295 cm–1 (酰胺带A,N-H或O-H伸缩振动峰,PK1)、2 925 cm–1 (C-H伸缩振动峰,PK2)、1 655 cm–1 (酰胺带I,C=O和N=O伸缩振动峰,PK3)、1 546 cm–1 (酰胺带II,C-N伸缩振动或N-H弯曲振动,PK4)、1 400 cm–1 (C-H弯曲振动,PK5)和1 050 cm–1 (C-O和C-C伸缩振动,PK6)[26]6个红外特征峰(图5表3)。PK1通常被用来评估和分析水分子与蛋白质之间的相互作用[27],陈星[28]研究发现超高压处理后肌原纤维蛋白热凝胶PK1波数的减少,并认为这可能是由于超高压处理促进了肌原纤维蛋白热凝胶内部的分子间氢键作用。红外光谱中的酰胺I带(1 600~1 700 cm–1)常用来分析蛋白质二级结构的变化[26]

      不同处理的低盐鲢鱼糜凝胶的FT-IR峰型基本一致(图5),各吸收峰位置并未发生明显变化(表3)。结果表明,超高压处理对低盐鱼糜凝胶的蛋白质骨架结构基本没有影响,对蛋白质二级结构的影响可能较小;另外,超高压处理对鱼糜凝胶分子内的氢键作用影响不大。因此,从分子间作用力的角度分析,超高压处理可能会增强鱼糜热凝胶中其他的分子间作用力(如疏水相互作用和二硫键等),从而提高了低盐鱼糜的凝胶特性。超高压改善低盐鲢鱼糜凝胶相关机制还有待进一步研究。

      样品
      sample
      傅里叶红外光谱各峰值数据/cm–1 FT-IR spectra peak data
      PK1 PK2 PK3 PK4 PK5 PK6
      2.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 3 295 2 926 1 654 1 546.6 1 400 1 050
      1.5% 氯化钠NaCl (0.1 MPa) 3 295 2 925 1 655 1 546.6 1 400 1 049
      1.5% 氯化钠NaCl (300 MPa/10 min) 3 293.8 2 925.5 1 654.6 1 546.6 1 402 1 051

      表 3  鱼糜凝胶的傅里叶红外光谱数据

      Table 3.  FT-IR spectra data of surimi gel

      图  5  鱼糜凝胶的傅里叶红外光谱

      Figure 5.  FT-IR spectra of surimi gel

    • 三维网络结构决定鲢鱼糜制品的凝胶强度、持水性 (WHC) 和质地[22]。超高压处理后的低盐鱼糜凝胶网络结构与常压对照组2 (添加1.5% NaCl)和常压对照组1 (添加2.5% NaCl)鱼糜凝胶网络结构明显不同(图6) 。与常压对照组1 (图6-ab)相比,常压对照组2鱼糜凝胶表面相对不平整(图6-c),孔隙较大(图6-d),凝胶结构松散不均匀,凝胶强度较低,持水性差。Cando等[7]研究也发现添加3% NaCl的鱼糜凝胶网络结构比0.3% NaCl的鱼糜凝胶更紧密,可能是较高浓度的NaCl对蛋白质有较好的增溶作用,使得蛋白质的结构更加致密。经300 MPa压力(图6-ef)处理的低盐鱼糜凝胶表面比较均匀平整,结构致密,孔洞数量明显减少,凝胶基质密度增强,说明低盐鲢鱼糜经超高压预处理后能形成光滑、连续、均匀的热凝胶。这可能是由于超高压诱导蛋白质发生适当变性,有助于低盐鱼糜形成网络结构较好的热凝胶[11]。此外,凝胶的网络结构越致密,存储的水分越多,持水性越高,凝胶强度也越大[29]。因此,适当的高压处理能够改善鲢鱼糜的热凝胶网状结构。

      图  6  鱼糜凝胶扫描电镜图 (×2 000,×10 000)

      Figure 6.  Micrographs of surimi gel (×2 000, ×10 000)

    • 1)采用100~500 MPa的超高压处理低盐鲢鱼糜凝胶,其凝胶强度和持水性随着压力增大呈现先增大后减小的趋势,超高压处理(300 MPa,10 min,室温)有助于提高低盐鲢鱼糜凝胶的凝胶强度和持水性。

      2) DSC和LF-NMR结果表明,300 MPa的超高压处理能够增加低盐鲢鱼糜凝胶中的不易流动水,减少自由水,且能够减弱凝胶中水的流动性,进而增强持水性。

      3)扫描电镜观察发现,超高压处理(300 MPa,10 min,室温)能使低盐鲢鱼糜形成密集的、细致均匀的三维网络结构。

      因此,超高压前处理能够诱导低盐鲢鱼糜热凝胶的水分含量和状态变化,且能改善低盐鲢鱼糜凝胶的网状结构,从而提高低盐鲢鱼糜凝胶的持水性和凝胶强度。

(6)  表(3) 参考文献 (29) 相关文章 (20)

目录

    /

    返回文章
    返回